О глазках
Традиционно и не очень


На главную


Электрофизиология зрительного анализатора

Электроретинография


Электроретинограмма представляет собой графическое отображение изменений биоэлектрической активности клеточных элементов сетчатки в ответ на световое воздействие.

I. Общая электроретинография

Общая или ганц-фельд электроретинограмма (ЭРГ) – это диффузный электрический ответ всей сетчатки при воздействии на нее вспышки света. Этот ответ обусловлен вызванными светом изменениями трансретинального ионного тока, главным образом выходом в межклеточное пространство натрия и калия. Такой вызванный потенциал сетчатки был зарегистрирован у всех позвоночных и у большинства беспозвочных. Впервые он был записан у рыб в 1865 году шведским физиологом Holmgren, который вначале ошибочно интерпретировал полученную им волновую форму как производную от потенциала действия в зрительном нерве (Holmgren F., 1865).

Вскоре после этого о подобных результатах своих исследований сообщил Dewar из Шотландии. Он показал, что транспупиллярное освещение глаза, предварительно прикрытого от светового воздействия, вызвало слабое отклонение стрелки гальванометра, что свидетельстовало о возникновении положительного электрического заряда на поверхности роговицы относительно задней части глаза (Armington, J., 1974). В 1877 году аналогичный электрический потенциал был впервые зарегистрирован у человека [1]. Однако электроретинограмма, которой по сути и был зарегистрированный ответ, не находила широкого клинического применения вплоть до середины 20 века ввиду сложностей ее регистрации и анализа. В 1941 году Riggs предложил для регистрации ЭРГ у человека использовать электроды в виде контактной линзы (Riggs L., 1941). и в 1945 году Karpe сообщил о результатах регистрации ЭРГ на 64 здоровых глазах и на 87 глазах пациентов с различной офтальмопатологией, создав первичный базовый уровень для дальнейших клинических исследований (Karpe G., 1945).

1. Исторический обзор

Общая (ганц-фельд) электроретинограмма представляет собой запись общей электрической активности большинства клеток сетчатки, а компоненты ЭРГ отражают работу разных ее структур. Исследования по локализации точного места происхождения компонентов ЭРГ ведутся уже более полувека. С этой целью использовались различные методики и техники регистрации ЭРГ, различия в которых позволили проводить сравнительную оценку их результатов.
Проводилось сравнение результатов ЭРГ у животных разных биологических видов с преобладанием в сетчатке колбочек либо палочек; после химического разрушения отдельных видов клеток сетчатки с помощью токсинов, обладающих заранее известной патогистологической направленностью воздействия, при применении микроэлектродной техники исследований отдельных клеточных слоев сетчатки. Проводились также наблюдения за изменением компонентов ЭРГ при использовании стимулов разной интенсивности и при разных уровнях световой адаптации.

Gotch (1903) был первым, кто сообщил о том, что электрический ответ глаза на световую вспышку состоит из двух волн: вначале на роговице появлялся отрицательный заряд, а затем возникала положительная волна большой амплитуды (Gotch F., 1903).
Позже Einthoven and Jolly (1908) сообщили о трех компонентах ЭРГ. Исследователи проанализировали ответ темноадаптированного глаза на вспышку белого света и разделили его на несколько составляющих. Самое первое отклонение от изолинии было определено как негативная волна «а». Последующий положительный компонент, который в норме имеет высокую амплитуду, был обозначен как волна «b». И, наконец, третий, наиболее поздний положительный компонент был назван волной «с». Кроме того, у некоторых млекопитающих была зарегистрирована невысокая волна "d" (или off-ответ), совпадающая с моментом прекращения освещения сетчатки.

На рисунке 1 представлены ЭРГ-ответы у разных видов животных и человека. Эти вызванные потенциалы были получены в ответ на яркую световую стимуляцию глаза после темновой адаптации. Электроретинограмма глаза черепахи (Рис. 1A), полученая в ответ на световую стимуляцию длительностью 900 ms, показывает комплекс волн «а» и «b» отдельно от волны «d», которая вызывается окончанием действия стимула. Яркий световой стимул длительностью 40 sec использовался для регистрации ЭРГ у жабы (Рис. 1Б) (Oakley B., 1977). Волны «а» и «b» сменяются медленной роговично-позитивной солной «c». После окончания действия стимула возникает волна «d». ЭРГ-ответы кролика (Рис. 1В) и человека (Рис. 1Г) были получены при воздействии быстрой яркой световой вспышки длительностью 50 или 100 мс и поэтому на электроретинограмме видны только волны «а» и «b». Кроме того, на ЭРГ человека на восходящей части волны «b» могут также определяться быстрые осцилляции. Представленные электроретинограммы разных видов животных и человека четко различаются по амплитуде и форме. Некоторые из этих различий обусловлены видовыми отличиями, особенно относительной плотностью палочек и колбочек в сетчатке, другие – техническими особенностями – длительностью и интенсивностью фотостимуляции, а также методикой регистрации ЭРГ. Несмотря на это, все представленные на рис.1 ЭРГ-ответы, а также и другие ЭРГ, пролученные у других видов позвоночных, характеризуются общими основными признаками – негативной волной «а» и следующей за ней позитивной волной «b».

Рис.1. (А) ЭРГ-ответ с глаза черепахи Pseudomys scripta elegans, вызванный световым стимулом длительностью 900 мс, с целью отделения волн «а» и «b» от волны «d»; (Б) ЭРГ жабы, в ответ на длительную световую стимуляцию (40 с), позволяющую дополнительно к волнам «а», «b» и «d» регистрировать волну «с» (Oakey, 1977); (В) ЭРГ кролика в ответ на вспышку белого света длительностью 20 мс; (Г) стандартная ЭРГ человека, обычно регистрируемая в клинике. На восходящей части волны «b» определяются быстрые осцилляции. Шкала калибровки представлена отдельно для каждого ЭРГ-ответа.

В 1911 году Piper опубликовал свой анализ электроретинограммы. Он разделил ЭРГ на 3 компонента: I, II and III (Armington, 1974). В отличие от Einthoven и Jolly, которые полагали, что волны ЭРГ отражают транзиторные химические процессы, Piper считал, что все все компоненты ЭРГ сохраняются на всем протяжении световой стимуляции. Согласно утоверждению Piper, первые две волны – I и II характеризовались разной латентностью и временными характеристиками таким образом, что их взаимодействие приводило к формированию волн «a» и «b». Волна III была эквивалентна волне «с». Представленный анализ был очень предположительным и основывался только на некоторых фактах. Однако, интерпретация Piper вместе с результатами исследований Einthoven и Jolly создали базис для идеи о том, что ЭРГ явялется результатом нескольких компонентов..

Рис. 2. Электроретинограмма кошки в ответ на световой стимул длительностью 2 с. Компоненты PI, PII, PIII были выделены в зависимости от стадии анестезии (Granit, 1933)

В 1933 году Granit опубликовал результаты более детального исследования компонентов ЭРГ у кошки после темновой адаптации (Granit R., 1933). C помощью роговичного электрода oн регистрировал ЭРГ у находящейся по наркозом кошки и наблюдал зависимость постепенного исчезновения разных компонентов ЭРГ на разных уровнях анестезии животного.
В соответствии с последовательностью исчезновения различных компонентов ЭРГ во время наркоза ученый назвал их Р-І, Р-ІІ и Р-ІІІ. Компонент Р-І представляет собой медленную роговично-позитивную волну. Компонент Р-ІІ также является роговично-позитивной волной, которая относительно быстро поднимается к пику амплитуды и затем регистрируется как промежуточный потенциал до тех пор, пока действует световая стимуляция.. Последний компонент P-III, который оказался наиболее устойчивым к уровням анестезии, представляет собой роговично-негативную волну, которая развивается быстрее, чем две других и сохраняет негативное значение до окончания действия стимула. Компонентный анализ ЭРГ, проведенный в последующие годы был незначительно изменен и дополнен, однако на сегодняшний день для понимания ЭРГ он остается базовым. За работу по электроретинограмме R. Granit в 1967 году был удостоен Нобелевской премии в области физиологии и медицины

Рис. 3. Ragnar Granit. Лауреат Нобелевской премии в области физиологии и медицины в 1967 году.

В дальнейшем было обнаружено, что компонент Р-ІІІ состоит из двух отдельных составляющих или фаз, которые происходят от двух разных классов клеток сетчатки. Компонент Р-ІІІ, полученный в сетчатке хладнокровных позвоночных, Murokami and Kaneko (1966) разделили на дистальный и проксимальный компоненты: дистальный был записан в слое фоторецепторов, проксимальный – во внутреннем ядерном слое.

Дистальный компонент Р-ІІІ совпадал с началом волны "а" электроретнограммы у обезьян (Brown K., 1965).
В последующем он был разделен на две фазы. Первая фаза, названная быстрым Р-ІІІ компонентом или рецепторным потенциалом, формирует волну "а" и отражает активность фоторецепторных клеток вследствие вызванного светом закрытия натриевых каналов в плазматических мембранах наружных сегментов фоторецепторов. Вторая, более медленно развивающаяся фаза – медленный Р-ІІІ компонент – имеет свое вероятное происхождение из дистальных отделов клеток Мюллера. Предполагают, что этот ответ клеток Мюллера возникает в результате вызванного светом снижения концентрации внеклеточного калия вблизи внутренних сегментов активированных фоторецепторов (Witkowsky Р. et al., 1975).

Рис. 4. Волны электроретинограммы: a-, b- и c-волна. Также показаны рецепторный потенциал, происходящий из фоторецепторов, и медленный PIII потенциал, который происходит, вероятно, из клеток Мюллера.




2. Электрические основы регистрации электроретинограммы

Электроретинограмма может быть записана с активного внеклеточного электрода, расположенного на роговице, в стекловидном теле либо на разных уровнях сетчатки. Внеклеточная регистрация электрической активности живой ткани возможна в том случае, когда электрические токи распространяются вдоль внеклеточного матрикса, обладающего электрическим сопротивлением (резистентностью). Примером внеклеточного электрического тока в сетчатке позвоночных является "темновой" ток, который протекает от внутренних сегментов фоторецепторов к наружным.
В сетчатке позвоночных фоторецепторы расположены параллельно друг к другу, вследствие чего их "темновые" токи также являются параллельными и суммируются, вызывая значительное возрастание радиальных внеклеточных токов, которые протекают от внутреннего ядерного слоя к пигментному эпителию сетчатки. Подобным образом внеклеточные токи от всех типов клеток сетчатки суммируются только в том случае, когда они имеют радиальное направление. Напротив, латеральные токи будут погашать друг друга, поскольку слои сетчатки имеют четкое симметричное строение. Поэтому, в случае однородного светового воздействия, направленного на всю сетчатку, внеклеточные токи будут исключительно радиальными. Эти токи будут протекать различными путями, включая отдаленные и локальные. В целом, их можно подразделить на два основных пути - локальный (А) и отдаленный (В), как показано схематично на рисунке 5а.
По пути А ток протекает локально в сетчатке, не покидая ее пределов. Ток, который проходит по пути В, покидает сетчатку через стекловидное тело и передние ткани глазного яблока и возвращается назад в сетчатку через склеру, хориоидею и слой пигментного эпителия. Электрический ток, который возникает в сетчатке в ответ на световую стимуляцию и следует по пути В, можно зарегистрировать с помощью неинвазивной техники, с использованием внеклеточных электродов (Рис. 5б).


Рис. 5a. Схематическое изображение внеклеточных токов, которые формируются в сетчатке в ответ на световую стимуляцию. Путь А представляет локальные токи внутри сетчатки, путь В - удаленные токи, которые покидают сетчатку через стекловидное тело и роговую оболочку и возвращаются в нее назад через хориоидею и пигментный эпителий. Регистрация ЭРГ у человека выполняется на участке пути В.

Рис. 5б. Электрическая схема сопротивлений, через которые проходят токи IA и IB (Рис. 3а), во время световой стимуляции сетчатки. Источник тока I на схеме, представляет собой электрический ток, который возникает в сетчатке в ответ на световую стимуляцию. Путь А - локальный маршрут, расположенный внутри сетчатки, путь В - удаленный маршрут, который выходит из сетчатки через стекловидное тело, хрусталик, роговицу, внеглазные ткани и возвращается назад в сетчатку через склеру, хориоидею и пигментный эпителий.

По закону Ома, градиент напряжения (электрического потенциала), который формируется во время прохождения электрического тока через проводник с сопротивлением R, равняется произведению силы тока на величину сопротивления проводника. Исходя из этого закона можно вывести соотношение между токами IA и IB, сопротивлением тканей глаза и величиной напряжения (разности потенциалов) (Рис. 5а).
На рисунке 5в изображена схема электрической цепи, которую образуют внутриглазные токи в ответ на световую стимуляцию (Rodieck, 1973). Под воздействием световой вспышки возникает внеклеточный ток (источник І), который протекает по двум путям: один путь проходит через сетчатку (локальный путь IA на рис. 3а), другой - выходит за пределы сетчатки и ткани глаза (удаленный путь IB на рис. 3а). Каждая из тканей глаза (например, сетчатка, стекловидное тело, склера, хориоидея, пигментный эпителий) обладает электрическим сопротивлением и изображена на рисунке в виде резистора. Согласно закону Ома, электрический потенциал между двумя точками не зависит от пути, по которому протекает ток. Поэтому разницу напряжения между двумя точками А и В можно расчитать как для локального, так и для удаленного пути протекания тока.

I A R 1= I B · (R 2 + R 3 + R 4 + R 5 + R 6 ) (1)

Так как сумма сопротивлений в правой части уравнения (R 2 + R 3 + R 4 + R 5 + R 6 ) больше, чем R1 , сила тока локального пути (I А ) должна быть выше, чем сила тока, протекающего по удаленному маршруту (I В ).
Если с помощью двух электродов попытаться зарегистрировать электрическую активность сетчатки, возникающую вследствие световой стимуляции, то максимальное значение электрического потенциала будет отмечено при расположении электродов в точках А и В по обе стороны клеток, в которых возникает электрический ответ. Однако, у человека или у лабораторных животных во время хронического опыта внедрить электроды в сетчатку для регистрации ЭРГ невозможно. Поэтому, альтернативой инвазивной технике регистрации ЭРГ служит неинвазивная, при которой активный и индиферентный электроды располагаются за глазным яблоком. Если электроды будут расположены в точках С и D (рис. 5в), градиент напряжения между ними будет равен

V C - V D= I B · R 4 (2)

или

V C - V D = I A R 1 - I B · (R 2 + R 3 + R 5 + R 6 ) (3)

Данное уравнение описывает электроретинограмму - изменение вызванного светом электропотенциала, который отражает электрическую активность сетчатки под воздействием световой стимуляции.
При ухудшении функции сетчатки, эта электрическая активность обычно снижается. Уменьшается сила токов I A и I В, вызывая соответственное снижение электроретинограммы, что указывает на патологию сетчатки.
Однако, необходимо помнить, что увеличение значения сопротивлений, и, таким образом, изменение соотношения между ними, также могут изменять электроретинограмму, которая записыватся с использованием неинвазивной техники и внеглазных электродов. Разделение электрического тока, который возникает в ответ на световую стимуляцию сетчатки, на локальный и удаленный пути зависит от относительных значений сопротивления этих двух путей. Исходя из уравнения (1) мы можем записать следующее соотношение:

I A/ I B = (R 2 + R 3 + R 4 + R 5 + R 6 )/ R 1 (4)

Изменение величины любого из сопротивлений будет вызывать изменения силы электрического тока, протекающего по внеглазному пути (I B ), а это значит, что электроретинограмма (V C - V D ) может изменяться независимо от функции сетчатки. Поэтому для правильной оценки ЭРГ в клинике и/или научных исследованиях очень важно знать величину сопротивления тканей глаза и понимать значение факторов, которые на него влияют.
Среди всех тканей глаза наивысшим сопротивлением обладает слой пигментного эпителия сетчатки (R-мембрана) (Bridley, 1956; Bridley and Hamasaki, 1963; Byzov, 1968; Ogden and Ito, 1971) (на рисунке 5в этот слой схематично обозначен в виде большого резистора R 6 ). Поэтому любые изменения его сопротивления будут влиять на протекание тока как по локальному (I A), так и по удаленному I В) путям. Эти изменения сопротивления будут отражаться на электроретинограмме, записанной с помощью внеглазных электродов, и могут объяснять как межвидовые различия в величине электроретинограммы, так и внутривидовой разброс показателей ЭРГ. Большое значение сопротивления тканей глаза для показателей ЭРГ было показано Arden and Brown (1965). С целью получения более высокого локального ЭРГ-потенциала, регистрируемого с поверхности сетчатки, исследователи прерывали прохождение электротока от сетчатки к противоположной стороне глазного яблока посредством замещения стекловидного тела у кошки тяжелым силиконовым маслом, обладающим диэлектрическими свойствами. Аналогично, в клинике было отмечено, что у пациентов с гигантскими разрывами сетчатки, которым было выполнено витреоретинальное вмешательство с введением в стекловидное тело силиконового масла, ЭРГ может быть существенно снижена. Такое снижение силы тока вызвано увеличением в несколько раз сопротивления стекловидного тела вследствии ввдения в него силиконового масла, которое не проводит электрические токи по удаленному пути I В. Результатом этого явлется формирование ЭРГ очень низкой амплитуды (Doslak et al., 1980; Foerster et al., 1985; Dolsak, 1988).


Литература

1. Arden G. B., Brown K. T. Some properties of components of the cat electroretinogram revealed by local recordings under oil. Journal of Physiology (London). - 1965. - Vol. 176. - P. 429-461.
2. Armington J. C. The Electroretinogram. – Academic Press, New York, 1974.
3. Brindley G.S. The passive electrical properties of the frog's retina, choroid and sclera for radial fields and currents. Journal of Physiology (London). - 1956. - Vol. 134. - P. 339-352.
4. Brindley G. S., Hamasaki D. I. The properties and nature of the R membrane of the frog's eye // Journal of Physiology (London). - 1963. - Vol. 167. - P. 599-60.
5. Brown K.T., Watanabe K., Murakami M. The early and late receptor potential of monkey cones and rods // Cold Spring Harbor Symp Quant Biol. – 1965. - №30. – Р.457.
6. Byzov A.L. Localization of the R-membrane in the frog eye by means of an electrode marking method // Vision Research. - 1968. - Vol. 8. - P. 697-700.
7. Doslak M. J., Plonsey R., Thomas C. W. The effects of variations of the conducting media inhomogeneities on the electroretinogram // IEEE Transactions of Biomedical Engineering. - 1980. - Vol. 27. -P. 88-94.
8. Doslak M. J. A theoretical study of the effect of silicone oil on the electroretinogram // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. - 1988. - Vol. 29. - P. 1881-1884.
9. Einthoven W., Jolly W. The form and magnitude of the electrical response of the eye to stimulation by light at various intensities // Quaterly Journal of Experimental Physiology. - 1908. - Vol.1. - P. 373-416.
10. Foerster M. H., Esser J., Laqua H. Silicone oil and its influence on electrophysiologic findings // Am J Ophthalmol. - 1985. - Vol.99. - P. 201-206.
11. Gotch F. The time relations of the photoelectric changes on the eyeball of the frog // J Physiology (London). - 1903. - Vol.29. - P. 388-416.
12. Granit R. The components of the retinal action potential in mammals and their relation to the discharge in the optic nerve // Journal of Physiology (London). – 1933. – Vol.77. – P.207-239.
13. Holmgren F. Method att objectivera effecten av ljusintryck pa retina // Ups Lakaref Forh. – 1865. - №1. – Р.1865-1866.
14. Karpe G. The basis of clinical electroretinography // Acta Ophthalmol. – 1945 (suppl 24). – P.1-118.
15. Murokami M., Kaneko A. Subcomponents of PIII in cold-blooded vertebrate retinae // Nature. – 1966. - №210. – P.103.
16. Oakley, B. I. (1977). Potassium and the photoreceptor-dependent pigment epithelium hyperpolarization. Journal of General Physiology 70, 405-425].
17. Ogden T. E., Ito H. Avian retina. II. An evaluation of retinal electrical anisotropy // Journal of Neurophysiology. - 1971. - Vol.34. - P. 367-373.
18. Riggs L. A. Continuous and reproducible rec­ords of the electrical activity of the human ret­ina // Proc Soc Exp Biol Med. – 1941. – V.48. – P.204-207.
19. Rodieck R. W. The Vertebrate Retina: Principles of Structure and Function. - San Francisco, 1973. - W.H. Freeman.
20. Witkowsky P., Dudek F., Ripps H. Slow PIII components of the carp electroretinogramm // J Gen Physiol. – 1975. – V.65. – P.119.


1     Дальше...


Hosted by uCoz